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文檔簡介
1、目的:探討骨髓間充質干細胞(bonemarrow mesenchymal stem cells,BM MSCs)在體外淋巴細胞參與下對乙型肝炎病毒(hepatitis B virus,HBV)復制的影響及其機制的初步研究。
方法:⑴選用體重80-100gBN大鼠,應用全骨髓培養(yǎng)/貼壁分離篩選法,分離、培養(yǎng)并擴增BM MSCs,應用流式細胞術對所培養(yǎng)的第3代細胞進行表面標記分子鑒定,并通過誘導培養(yǎng)分化為脂肪、成骨細胞,檢測BM
2、MSCs的分化能力。⑵細胞共培養(yǎng):選取狀態(tài)良好的第三代BM MSCs,提取BN大鼠新鮮的脾淋巴細胞,選擇培養(yǎng)狀態(tài)良好的HepG2.2.15細胞,采用Transwell小室做細胞共培養(yǎng)。實驗分組:共5組,第1組為單純脾淋巴細胞組;第2組為單純HepG2.2.15細胞組;第3組為BM MSCs+Hep G2.2.15細胞組;第4組為脾淋巴細胞+HepG2.2.15細胞組;第5組為脾淋巴細胞+BM MSCs+HepG2.2.15細胞組。⑶在共
3、培養(yǎng)24 h、48 h及72 h后,采用MTT法對脾淋巴細胞及貼壁細胞進行細胞活性檢測,實時定量PCR測定上清液中HBV DNA水平、HepG2.2.15細胞內HBV cccDNA水平及BM MSCs中的HBVcccDNA水平,流式細胞術對T淋巴細胞亞群的比例變化進行檢測,應用ELISA法檢測上清液中細胞因子IFN-γ、IL-10水平。
結果:①BM MSCs鑒定:在體外成功提取并擴增BM MSCs,對所提取的細胞進行鑒定,其
4、具備典型的 MSCs的形態(tài)特點,培養(yǎng)到第3代細胞進行表面標記分子學鑒定,結果顯示:CD29、CD90、RT1A表達的陽性率分別為97.0%、96.3%和96.3%,而CD34、CD45、RT1B陰性率均>95%,且經(jīng)誘導培養(yǎng)分化后,所提細胞經(jīng)誘導培養(yǎng)能夠成功分化為成骨細胞(經(jīng)由von kossa染色后在顯微鏡下可以觀察到黑色鈣鹽沉積)及脂肪細胞(經(jīng)由油紅 O染色后顯微鏡下可觀察到細胞胞漿內呈紅色脂滴)。②檢測BM MSCs對HBV復制的
5、影響:在體外細胞培養(yǎng)的環(huán)境下HBV DNA及HBV cccDNA在24h、48h及72h時,與第2、3和4組比較,第5組HBV DNA的表達水平明顯降低,且在48h時差異顯著, HBV DNA:(181.000±14.731)IU/mLvs(6270.000±300.450)IU/mL、(2564.000±231.058)IU/mL、(2433.300±302.379)IU/mL;HBV cccDNA:(4.330×105±0.464×
6、105)IU/mL vs(11.100×105±0.375×105)IU/mL、(8.930×105±0.778×105) IU/mL、(9.850×105±0.810×105)IU/mL,P<0.01;各組BM MSCs中均未檢測出HBV cccDNA的復制。③BM MSCs對HBV復制影響機制:細胞因子檢測結果,上清中淋巴細胞及BM MSCs分泌IFN-γ的水平與HBV DNA水平呈負相關(淋巴細胞24 h:r=-0.900;48
7、h:r=-0.982;72 h:r=-0.968,P<0.05。BM MSCs24h:r=-0.828;48h:r=-0.922;72h,r=-0.828,P<0.05),而IL-10水平與HBV DNA水平呈正相關(24h:r=0.860,48h:r=0.972,P<0.05)。T細胞亞群檢測,結果顯示CD4+/CD8+比例有所升高,且經(jīng)相關性分析,共培養(yǎng)后淋巴細胞表面標志CD8+細胞的百分率與HBV DNA水平呈正相關(24h:r=
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