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文檔簡介
1、本研究分為四部分: 第一章、異種骨移植材料的制備與生物學特性研究 目的:異種骨移植可以解決臨床上自體骨與同種骨來源不足的問題,目前常用的處理方法雖可有效降低其免疫原性,但破壞了骨誘導活性與生物力學性能。α-半乳糖抗原(α-Gal)是主要的異種抗原,本研究擬采用α-半乳糖苷酶消化豬骨組織,旨在探索一種既能去除其抗原性,又保留其力學性能與成骨活性的異種骨材料處理方法。 方法: (1)豬骨組織的酶消化:取市售新
2、鮮豬骨,清洗去除血液與骨髓組織,酒精脫脂,分別采用酶活性為15U/ml、30U/ml、60U/ml的α-半乳糖苷酶37℃下消化8、16h,徹底清洗; (2)骨組織中α-Gal抗原相對含量的檢測 (3)豬骨與戊二醛的交聯(lián):根據(jù)ELISA法檢測結果篩選出一組較為合理的酶消化條件,將該組豬骨經(jīng)戊二醛交聯(lián)處理,檢測交聯(lián)后豬骨α-Gal抗原相對含量,并與未經(jīng)酶消化的新鮮豬骨、酶消化豬骨比較,根據(jù)結果確定制備方法; (4)豬
3、骨組織的形態(tài)學觀察:對制備的豬骨進行大體觀察、掃描電鏡觀察,用SmileView軟件測量其腔隙的直徑; (5)豬骨的力學性能檢測:豬松質骨制備成10mm×10mm×20mm規(guī)格骨塊,按優(yōu)化篩選的方法酶消化,用電子萬能材料試驗機檢測其抗壓強度與彈性模量,以觀察酶消化對異種骨材料力學性能的影響。 結果: (1)豬骨組織的酶消化:不同活性的α-半乳糖苷酶消化不同時間的豬骨組織中α-gal抗原含量不同,酶消化一定時間后O
4、D值趨于穩(wěn)定,優(yōu)化篩選酶消化條件為酶活性30U/ml的α-半乳糖苷酶消化8h; (2)豬骨與戊二醛的交聯(lián):30U/ml消化8h組與交聯(lián)組的α-Gal抗原相對含量差異不顯著,而與新鮮豬骨有顯著性差異(P<0.05)。 (3)豬骨的形態(tài)學觀察:掃描電鏡觀察表明制備的豬骨為呈三維網(wǎng)狀多孔結構,其腔隙大小在150μm-600μm之間,骨小梁上分布有孔徑在10μm-100μm的小孔; (4)力學性能檢測:各試驗組材料的抗壓
5、強度、彈性模量均沒有統(tǒng)計學上的差異,酶消化對力學性能的無顯著影響。 結論:優(yōu)化篩選較為合理的豬源性異種骨的酶消化方法為酶活性30U/ml的α-半乳糖苷酶37℃下消化8h,制備方法有效去除了α-Gal抗原,對豬骨材料的形態(tài)學結構與力學性能無明顯影響。 第二章、異種骨移植材料的生物學評價 目的:采用體外細胞毒性實驗與動物體內(nèi)實驗方法,評價所制備的豬骨材料的生物相容性。 方法: (1)兔骨髓間充質干細胞
6、(BMSCs)培養(yǎng):取乳兔四肢骨骨髓,原代培養(yǎng)8-10天后傳代培養(yǎng),用臺盼藍染色方法判定細胞活力,取F1、2、3代細胞,流式細胞儀檢測表面抗原CD44陽性率。 (2)體外細胞毒性試驗:采用MTT法檢測豬源性異種骨對BMSEs生長增殖的影響。經(jīng)酶消化的5mm×5mm×5mm豬源性異種骨小塊,參照中華人民共和國國家標準《醫(yī)療器械生物學評價》,按1g豬骨:10ml浸提液的比例,無菌密閉容器內(nèi)10%胎牛血清(FBS)L-DMEM培養(yǎng)液3
7、7℃浸取72h,取上清液加作為實驗組培養(yǎng)基,以含10%FBS的L-DMEM培養(yǎng)液為對照。以F3代BMSCs為實驗細胞,制成細胞濃度約1×105/ml的細胞懸液,5%CO2培養(yǎng)箱37℃培養(yǎng)24h,按組別分別以異種骨浸提液與對照培養(yǎng)液培養(yǎng),每隔24h取5孔,MTT法檢測吸光值。 (3)豬骨與兔BMSCs的復合培養(yǎng):將F3代兔BMSCs消化成濃度為1×105/ml左右的細胞懸液,接種于5mm×5mm×5mm的經(jīng)酶消化的豬骨小塊上,加1
8、0%FBS的L-DMEM培養(yǎng)基至液面沒過骨塊,置于5%CO2培養(yǎng)箱37℃培養(yǎng),分別于培養(yǎng)的1w,2w,3w,倒置相差顯微鏡下觀察材料周圍細胞生長情況,取材后2.5%戊二醛固定3h,脫水,干燥,噴金,掃描電鏡下觀察細胞的形態(tài)與生長情況。 (4)動物體內(nèi)植入局部刺激反應試驗:參照國家標準GB/T16886.6-1997進行異種骨植入材料局部反應評價。Wistar鼠18只,體重150g左右,麻醉,于脊柱兩側皮下及股部肌袋內(nèi)分別植入規(guī)格
9、為5mm×5mm×5mm的豬骨小塊與人骨小塊。術后大體觀察動物飲食、活動、切口反應等情況。分別于術后1、4、12周處死6只大鼠,取出植入塊及其周圍包裹的組織,行大體觀察、組織學觀察。 采用SPSS11.5統(tǒng)計軟件進行統(tǒng)計分析,體外細胞毒性實驗BMSCs的OD值采用析因設計的方差分析,同一時間點兩組數(shù)據(jù)比較采用獨立樣本t檢驗,檢驗水準為α=0.05。 結果: (1)BMSCs的培養(yǎng):傳代培養(yǎng)的BMSCs形態(tài)均一,生
10、長旺盛,F(xiàn)1-F3代細胞成活率均在95%左右,F(xiàn)1代、F2代、F3代細胞CD44陽性率分別為93.9%、95.1%、95.8%。 (2)體外細胞毒性試驗:相同時間實驗組與對照組間OD值無顯著性差異(F=0.070,P=0.7910),豬骨材料對BMSCs的生長與增殖無明顯影響,表明其無細胞毒性。 (3)豬骨與BMSCs復合培養(yǎng):隨著培養(yǎng)時間延長,材料周圍細胞逐漸聚集,細胞狀態(tài)正常:掃描電鏡下觀察,細胞在豬骨材料表面緊密貼
11、附生長,細胞呈多邊形、梭形,有較多的偽足向豬骨材料表面伸出,細胞形態(tài)正常,功能活躍,表明該材料細胞相容性良好。 (4)動物體內(nèi)植入后的局部刺激反應試驗:皮下與肌內(nèi)植入后1w,纖維組織包裹并長入植入的豬骨腔隙內(nèi),伴有較明顯的炎性細胞浸潤,4w時,炎癥反應減輕,12w時,植入的豬骨腔隙內(nèi)由疏松的結締組織充填,炎癥反應消失,與周圍正常組織中的無明顯區(qū)別,表明豬骨材料具有良好的組織相容性。 結論:酶消化法所制備的豬源性異種骨移植
12、材料具有良好的生物相容性。 第三章、異種骨移植材料的骨誘導活性研究 目的:采用免疫抑制大鼠為實驗動物,以異位成骨的方式,通過組織學觀察、堿性磷酸酶活性測定,評價所制備異種骨的骨誘導活性。 方法:實驗組材料為α-半乳糖苷酶消化去抗原的豬皮質骨,0.6N的HCI脫礦,以脫礦后經(jīng)高溫高壓處理滅活其成骨活性物質的豬骨為陰性對照。Wistar大鼠24只,體重約150-180g,腹腔注射地塞米松,劑量為每次0.25mg/10
13、0g體重,每3天一次,造成免疫抑制。大鼠麻醉后,兩側股部肌袋分別植入實驗組材料和對照樣品,縫合肌肉皮膚。術后3、4、5、6w各處死6只大鼠,取出植入材料,固定,包埋,行組織學觀察;將植入物稱重,研磨粉碎,加2ml生理鹽水提取,3000rpm離心20min,取上清液,測堿性磷酸酶(ALP)活性。 用SPSS11.5統(tǒng)計軟件對ALP活性檢測結果進行統(tǒng)計分析,采用析因設計資料的方差分析,同一時間點兩組數(shù)據(jù)比較采用獨立樣本t檢驗,檢驗水
14、準為α=0.05。 結果:組織學觀察顯示,實驗組植入材料3w時被纖維組織包裹,其吸收腔內(nèi)可見有間充質細胞開始長入:可見有間充質細胞轉變形成軟骨細胞,并開始分泌形成軟骨基質;4w時植入材料內(nèi)有較多軟骨組織形成;5w時形成成熟的軟軟骨組織;6w時,成骨更為活躍,植入材料內(nèi)有更多的成熟軟骨組織形成,在其邊緣吸收腔隙內(nèi)有類骨質形成:術后3-6w,對照組樣品顯示吸收,但未見成骨相關的細胞,也無軟骨或骨組織形成。ALP活性測定結果顯示,不同
15、時間點的ALP活性差異顯著(F=321.084,P=0.000)。實驗組與對照組間差異顯著(F=484.330,P=0.000),同一取材時間點實驗組ALP活性均比對照組高(P<0.05)。 結論:采用α-半乳糖苷酶消化去抗原的豬源性異種骨保留了良好的骨誘導活性,可以作為一種潛在的骨移植替代材料,來彌補臨床上自體骨與同種骨材料來源的不足。 第四章、異種骨修復兔橈骨節(jié)段性骨缺損的實驗研究 目的:利用兔橈骨節(jié)段性骨缺
16、損模型,觀察與評價所制備豬源性異種骨移植材料對兔節(jié)段性骨缺損的修復,為臨床應用提供實驗依據(jù)。 方法:家兔24只,體重2-2.5kg,以雙側橈骨為實驗對象。家兔靜脈注射3%戊巴比妥鈉麻醉,用牙科鉆截斷橈骨干中段,造成雙側橈骨約12mm長的節(jié)段性骨缺損,按組植入相應骨移植材料。分別于第4、8、12周分批處死動物8只,取尺橈骨全段。實驗分組:根據(jù)植入材料不同分組,每組每個時間點4例,A組為空白對照組,節(jié)段性骨缺損處不植入任何材料,直接
17、縫合,作為陰性對照:B組為異種骨組,植入酶處理方法制備的去抗原豬骨;C組為兔同種骨組,植入兔松質骨;D組為自體骨組,將取下的兔橈骨骨段用無菌生理鹽水清洗后,植于其對側骨缺損處。 數(shù)據(jù)結果采用SPSS11.5統(tǒng)計軟件包進行統(tǒng)計分析,X線評分采用析因設計資料的方差分析,方差齊性時組間多重比較采用LSD法,不滿足方差齊性要求時,組間多重比較采用Dunnet’sT3法,統(tǒng)計學顯著水平為α=0.05。 結果:大體觀察:術后各組動物
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