

版權(quán)說明:本文檔由用戶提供并上傳,收益歸屬內(nèi)容提供方,若內(nèi)容存在侵權(quán),請進行舉報或認領(lǐng)
文檔簡介
1、一、研究背景:每年,全球死于心血管疾病的人數(shù)大約有一千七百萬之多,而冠狀動脈粥樣硬化性心臟病則占所有心血管疾病死亡率的50%以上。血管內(nèi)皮功能與結(jié)構(gòu)的損傷被認為是動脈粥樣硬化發(fā)生與發(fā)腱的普遍機理。因此,尋找一種有效的方法來防治血管內(nèi)皮損傷已成為目前研究的熱點與焦點。 冠狀動脈搭橋術(shù)后橋血管再狹窄的原因仍然是動脈粥樣硬化病變的重復或延續(xù)。體內(nèi)業(yè)已存在的危險因素從橋血管被連接到冠狀動脈循環(huán)起,就開始了對橋血管內(nèi)皮的作用,造成移植后橋
2、血管內(nèi)皮功能與結(jié)構(gòu)的損傷,粥樣斑塊形成,繼而出現(xiàn)橋血管再狹窄。 血管內(nèi)皮細胞不僅僅是血液和組織之間的屏障,還具有其他多種功能,是一個具有高動力的自分泌和旁分泌器官。內(nèi)皮受損、功能不全可導致冠狀動脈張力調(diào)節(jié)功能受損,NO合成減少、ET分泌增加,內(nèi)皮性生長因子釋放增加,促使脂質(zhì)向內(nèi)膜下遷移、沉著,形成氧化型低密度脂蛋白,平滑肌細胞由分化狀態(tài)變?yōu)槿シ只癄顟B(tài),從中層向內(nèi)膜遷移,并在內(nèi)膜下大量增殖和產(chǎn)生大量細胞外基質(zhì),導致內(nèi)膜重塑,同時激
3、活了血小板、促使血小板釋放活性物質(zhì)如TXA2、5-羥色胺等,從而產(chǎn)生內(nèi)膜斑塊,引起動脈管腔狹窄。 本實驗利用小干擾RNA(smallinterferingRNAsiRNA)沉默CypD蛋白編碼基因Ppif,下調(diào)內(nèi)皮細胞中CypD蛋白的表達水平,同時利用基因克隆技術(shù),建立CypD蛋白高表達的內(nèi)皮細胞模型,研究在過度氧化應(yīng)激條件下,CypD蛋的不同表達水平對血管內(nèi)皮細胞抗氧化損傷能力及內(nèi)皮細胞功能的影響,從而探討CypD蛋白在內(nèi)皮細
4、胞功能障礙發(fā)生與發(fā)展中的作用,為防治冠狀動脈粥樣硬化性心臟病及外科術(shù)后橋血管再狹窄開辟新的思路。 二、研究目的: 1.建立內(nèi)皮細胞氧化損傷凋亡模型。 2.觀察凋亡模型中內(nèi)皮細胞CypD蛋白及其編碼基因Ppif表達程度的變化與內(nèi)皮細胞凋亡的關(guān)系。 3.建立CypD蛋白缺陷型內(nèi)皮細胞模型,在過度氧化應(yīng)激條件下,比較CypD蛋白缺陷型內(nèi)皮細胞與正常內(nèi)皮細胞抗損傷能力的差異及兩組內(nèi)皮細胞功能的變化。 4.
5、建立CypD蛋白高表達內(nèi)皮細胞模型,在過度氧化應(yīng)激條件下,比較CypD蛋白高表達內(nèi)皮細胞與正常內(nèi)皮細胞抗損傷能力的差異。 三、實驗對象和方法: 1.實驗細胞: 在37℃,5%CO2,飽和濕度的培養(yǎng)箱中,用10%FCS的高糖型DMEM培養(yǎng)從武漢大學典藏中心購買的人臍靜脈內(nèi)皮細胞株ECV304細胞。 2.建立內(nèi)皮細胞氧化損傷凋亡模型: 將細胞分為A、B、C、D四組,每組重復3次。其中A、B、C為實驗組
6、,分別用含100uM、300uM和500uMH2O2處理ECV304細胞,于飽和濕度、37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中分別培養(yǎng)0min、30min、60min、90min和120min,換普通含10%FCS的高糖型DMEM培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)24h,D組為空白對照組,用不含H2O2的PBS液處理細胞,方法同上。 3.建立CypD缺陷型細胞: Ppif基因的siRNA由上海吉瑪生物公司合成,其雙鏈的基因序列為:Sence5'—GCCG
7、CUUUCCUGACGAGAATT—3’,Anti—sence5’—UUCUCGUCAGGAAAGCGGCTT—3’。將ECV304細胞按1×105個/孔接種于6孔板中培養(yǎng)24h,待細胞生長致融合70%時,用Lipofectamine2000按其說明上推薦的步驟,將siRNA轉(zhuǎn)染進ECV304細胞,6h后用熒光顯微鏡和流式儀進行轉(zhuǎn)染率的檢測,并更換為普通培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)12h、24h、48h、72h。 4、建立CypD高表達型細胞
8、: 合成Ppif基因的cDNA,并與載體pCDNA6/myc—HisB相連,生成Ppif質(zhì)粒,通過脂質(zhì)體Lipofectamine2000將質(zhì)粒轉(zhuǎn)入細胞,建立CypD蛋白高表達內(nèi)皮細胞模型。 5.實驗分組: 按CypD蛋白是否正常分為CypD缺陷型細胞組、CypD蛋白高表達細胞組和正常細胞組,每組3個以上樣本。三組細胞均用凋亡模型濃度的H2O2處理120min或90min后,更換普通培養(yǎng)基再培養(yǎng)12h或24h,然
9、后進行后續(xù)檢測。 6.流式細胞儀檢測各組細胞凋亡率。 7.Westernblot檢測: 提取各組細胞樣本的總蛋白,westernblot檢測樣本中CypD蛋白的相對表達水平。 8.實時熒光定量RT—PCR檢測(q—RT—PCR): 提取各組細胞樣本的總RNA,反轉(zhuǎn)錄獲得cDNA進行real—timePCR,分析各組細胞的Ppif基因的相對表達水平。 9.NO檢測: 按照NO檢測試劑
10、盒說明書操作,在540nm檢測吸光度OD值,根據(jù)公式計算NO含量。 10.電鏡觀察各組細胞超微結(jié)構(gòu)的變化。 11.統(tǒng)計學處理: 計量資料以x±s表示,采用SPSS13.0軟件進行重復測量數(shù)據(jù)的方差分析、雙變量相關(guān)分析以及均數(shù)檢驗,檢驗水準取α=0.05。 四、實驗結(jié)果: 1.內(nèi)皮細胞凋亡模型組中的凋亡率、NO及CypD蛋白、Ppif基因相對表達量的變化: 重復測量數(shù)據(jù)方差分析示A、B、D三
11、組間細胞凋亡率的差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),但C組與A、B、D組的差異均有統(tǒng)計學意義(P=0.001),均數(shù)檢驗示C組內(nèi)各時間點的差異也有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。Pearson相關(guān)分析示C組凋亡率與H2O2作用時間呈顯著正相關(guān)(相關(guān)系數(shù)為0.982,P<0.001)。 C組與D組細胞培養(yǎng)液中總一氧化氮的量分別為(8.46±0.77)μM和(21.28±1.94)μM,兩獨立樣本T檢驗的結(jié)果表明差異有顯著的統(tǒng)計學意義,D
12、組的一氧化氮分泌總量明顯比C組的要高,P<0.001。 正常ECV304細胞中CypD蛋白的分子量約為17KD。在C組中,隨著氧化應(yīng)激時間延長,CypD蛋白和ppif基因表達量也逐漸增加。30min、60min、90min和120min時間點的ppif基因表達量分別為0min的2.19倍、2.48倍、2.36倍和1.64倍(P<0.05)。 2.CypD缺陷型細胞凋亡率、NO及CypD蛋白、Ppif基因相對表達量的變化:
13、 流式檢測siRNA的瞬時轉(zhuǎn)染率為(97.96±0.31)%。 Q—RT—PCR結(jié)果表明,Ppif的沉默效率在轉(zhuǎn)染后的第48h最高,下調(diào)達11倍。 siRNA轉(zhuǎn)染后westernblot檢測結(jié)果顯示,CypD蛋白表達水平隨轉(zhuǎn)染時間延長而逐漸減弱。 CypD缺陷型細胞組與正常細胞組的凋亡率分別為(32.51±6.6)%和(52.57±5.84)%,差異有統(tǒng)計學意義(P=0.001)。 CypD缺陷型
14、細胞組與正常細胞組細胞培養(yǎng)液中總一氧化氮的量分別為(24.06±3)μM和(13.03±3.55)μM,差異有顯著的統(tǒng)計學意義,P=0.015。 3.CypD高表達細胞凋亡率及CypD蛋白、Ppif基因相對表達量的變化: Q—RT—PCR結(jié)果表明,Ppif的表達在轉(zhuǎn)染后的第24h最高,上調(diào)達274倍。 Ppif質(zhì)粒轉(zhuǎn)染細胞后westernblot檢測結(jié)果顯示,CypD蛋白表達水平隨轉(zhuǎn)染時間延長而逐漸升高,在轉(zhuǎn)染后
15、第48h達最高峰。 CypD高表達型細胞組與正常細胞組的凋亡率分別為(24.24±3.08)%和(7.7±0.68)%,差異有顯著的統(tǒng)計學意義(P<0.001)。 4.細胞超微結(jié)構(gòu)的變化: 透射電鏡觀察,PBS對照組以正常細胞為主,很少見凋亡;凋亡模型組細胞出現(xiàn)明顯凋亡樣改變,凋亡細胞很多,細胞微絨毛減少,大多數(shù)細胞核碎裂,可見典型核染色質(zhì)濃集,分布于核膜周邊,線粒體高度腫脹,細胞器高度破壞并出現(xiàn)較多空泡,部分僅
16、見細胞輪廓;而CypD缺陷型細胞組中,細胞凋亡數(shù)量明顯較凋亡模型組減少,形態(tài)改變也較輕,多為早期凋亡特征,線粒體腫脹成球型,許多細胞膜仍正常。 五、結(jié)論: 1.證實了在氧化應(yīng)激條件下,CypD蛋白是ROS誘導增多的,引起線粒體損害、進而引起內(nèi)皮細胞凋亡的一個關(guān)鍵的損傷性蛋白。 2.改進了內(nèi)皮細胞氧化應(yīng)激凋亡模型。模型中,即使去除了氧化應(yīng)激的因素,細胞凋亡反應(yīng)仍在繼續(xù),使模型的生理模擬性和特異性更高。 3.
溫馨提示
- 1. 本站所有資源如無特殊說明,都需要本地電腦安裝OFFICE2007和PDF閱讀器。圖紙軟件為CAD,CAXA,PROE,UG,SolidWorks等.壓縮文件請下載最新的WinRAR軟件解壓。
- 2. 本站的文檔不包含任何第三方提供的附件圖紙等,如果需要附件,請聯(lián)系上傳者。文件的所有權(quán)益歸上傳用戶所有。
- 3. 本站RAR壓縮包中若帶圖紙,網(wǎng)頁內(nèi)容里面會有圖紙預(yù)覽,若沒有圖紙預(yù)覽就沒有圖紙。
- 4. 未經(jīng)權(quán)益所有人同意不得將文件中的內(nèi)容挪作商業(yè)或盈利用途。
- 5. 眾賞文庫僅提供信息存儲空間,僅對用戶上傳內(nèi)容的表現(xiàn)方式做保護處理,對用戶上傳分享的文檔內(nèi)容本身不做任何修改或編輯,并不能對任何下載內(nèi)容負責。
- 6. 下載文件中如有侵權(quán)或不適當內(nèi)容,請與我們聯(lián)系,我們立即糾正。
- 7. 本站不保證下載資源的準確性、安全性和完整性, 同時也不承擔用戶因使用這些下載資源對自己和他人造成任何形式的傷害或損失。
最新文檔
- 流體剪切應(yīng)力作用強度對內(nèi)皮細胞Fractalkine表達水平的影響.pdf
- 流體低剪切應(yīng)力作用時間對內(nèi)皮細胞Fractalkine表達水平的影響.pdf
- 白藜蘆醇對內(nèi)皮細胞eNOS、Cav-1表達的影響.pdf
- SHPT患者血清對內(nèi)皮細胞影響及klotho蛋白的保護作用.pdf
- 天然及氧化修飾高密度脂蛋白對內(nèi)皮細胞部分分泌功能的影響.pdf
- 葡萄籽原花青素對內(nèi)皮細胞直接作用及對糖基化損傷內(nèi)皮細胞的影響.pdf
- 內(nèi)皮細胞的分離培養(yǎng)及洛克沙胂對內(nèi)皮細胞影響的初步研究.pdf
- 川芎嗪對內(nèi)皮細胞損傷的保護作用研究.pdf
- 鋅指基因ZNF580過表達對內(nèi)皮細胞基因表達譜的影響.pdf
- 溫脈通對血管內(nèi)皮損傷的保護及對內(nèi)皮細胞黏附的影響.pdf
- 心脈神口服液拮抗氧化低密度脂蛋白介導的內(nèi)皮細胞損傷效應(yīng).pdf
- 初探內(nèi)皮細胞膜微粒(EMPs)于體外對內(nèi)皮細胞功能及凋亡的影響.pdf
- 腫瘤條件培養(yǎng)基致內(nèi)皮細胞表面糖鏈表達變化及其對內(nèi)皮細胞形態(tài)功能的影響.pdf
- GLP-1對氧化激誘導內(nèi)皮細胞損傷的影響.pdf
- 甘肅黃芪黃酮化合物對內(nèi)皮細胞損傷的保護.pdf
- 姜黃素對氧化性低密度脂蛋白誘導的內(nèi)皮細胞遷移能力的影響.pdf
- 血小板CD154對內(nèi)皮細胞TF、TFPI表達的影響.pdf
- 抗內(nèi)皮細胞抗體介導的內(nèi)皮細胞損傷機制.pdf
- 高糖及氧化型低密度脂蛋白刺激對動脈內(nèi)皮細胞sirturin-3蛋白水平表達的影響.pdf
- AGE和Hcy對內(nèi)皮細胞協(xié)同損傷作用的實驗研究.pdf
評論
0/150
提交評論