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文檔簡介
1、達托霉素是從玫瑰孢鏈霉菌發(fā)酵液中分離的一種具有環(huán)脂肽結(jié)構(gòu)的新型抗生素,結(jié)構(gòu)新穎,作用機制特殊,對革蘭氏陽性菌有較好的抑菌效果。其獨特的環(huán)脂肽結(jié)構(gòu)及作用機制,使其將不會受到來自其它抗生素所致交叉耐藥性的影響,具有廣闊的市場前景。達托霉素屬于微生物次級代謝產(chǎn)物,其生物合成基因是以“基因簇”的形式存在的,全長128kb,經(jīng)細胞非核糖體途徑合成。非核糖體途徑的肽合成不依賴mRNA為模板,也不以tRNA為載體,而是通過非核糖體肽鏈合成酶(NRPS
2、s)識別特定的氨基酸并連接成多肽。
目前,達托霉素的制備方法主要有天然發(fā)酵法、前體誘導法、化學合成、酶法半合成等,由于達托霉素特有的環(huán)脂肽結(jié)構(gòu),并且含有特殊氨基酸成分,因而微生物發(fā)酵生產(chǎn)達托霉素還是目前較為常用的方法。但是此方法的達托霉素表達量較低,無法滿足產(chǎn)業(yè)化需求,對該生產(chǎn)菌進行改造,提高達托霉素表達水平是很有必要的。
此外,合成生物學的飛速發(fā)展對抗生素的篩選、改造和制備提供了全新的思路。合成生物學以系統(tǒng)
3、化設計和工程化構(gòu)建為理念,旨在對多種天然的或人工設計的生物學元件進行合理而系統(tǒng)的組合以獲得重構(gòu)的或非天然的“生物系統(tǒng)”。目前達托霉素生物合成途徑及相關功能基因已經(jīng)被成功解析,應用合成生物學技術(shù)可以對其生物合成基因簇進行人為的遺傳操作,如通過基因替換篩選新型抗生素、通過更改宿主提高表達量等等。但目前國內(nèi)合成生物學研究還屬于起步階段,尚無對超大DNA片段,尤其是來源于鏈霉菌的大片段DNA進行遺傳操作的成功報道。
為了掌握合成生
4、物學的關鍵技術(shù)體系,尤其是大片段基因的操作技術(shù),為后續(xù)的達托霉素合成生物學研究奠定基礎,本研究一方面通過對達托霉素原始生產(chǎn)菌(ATCC31568)進行紫外誘變結(jié)合抗生素抗性篩選處理,初步提高達原始生產(chǎn)菌的生產(chǎn)能力,并建立系統(tǒng)的發(fā)酵培養(yǎng)、分離純化、分離檢測技術(shù)。同時通過構(gòu)建達托霉素生產(chǎn)菌----玫瑰孢鏈霉菌基因組BAC文庫,篩選達托霉素合成基因簇,利用接合轉(zhuǎn)移的方法,實現(xiàn)達托霉素在變鉛青鏈霉菌中的表達,以掌握大片段基因操作技術(shù)。
5、 本論文利用大腸桿菌-鏈霉菌穿梭型pESPBAC質(zhì)粒構(gòu)建了包含24塊96孔板共2304個克隆組成的玫瑰孢鏈霉菌基因組BAC文庫,插入片段大于140kb。利用達托霉素合成基因簇特異性引物進行PCR篩選,成功篩選到含有完整達托霉素合成基因簇的BAC質(zhì)粒,命名為pESPBAC-DAP。并利用其在大腸桿菌和鏈霉菌之間的可穿梭性,將pESPBAC-DAP質(zhì)粒先電轉(zhuǎn)入E.coliET12567(pUZ8002)中,利用大腸桿菌和鏈霉菌的接合轉(zhuǎn)移
6、作用,在輔助質(zhì)粒pUZ8002的輔助下,將達托霉素合成基因簇轉(zhuǎn)移至變鉛青鏈霉菌TK24中,由于pESPBAC載體上存在噬菌體基因組attP位點,在鏈霉菌噬菌體(φ)C31的整合酶int作用下,與鏈霉菌基因組中的attB位點發(fā)生位點特異性重組,將達托霉素合成基因簇整合到變鉛青鏈霉菌TK24基因組中。對整合后的變鉛青鏈霉菌TK24進行發(fā)酵,利用HPLC檢測到達托霉素的表達,表達量為30.2mg/L,并對其活性進行檢測。
通過紫
7、外誘變加大出發(fā)菌株突變率的同時,使用利福平(Rifampicin)和慶大霉素(Gentamicin)進行抗性篩選,進一步改良菌株,增加了菌株的抗性標記,快速、有效地提高了菌株的生產(chǎn)能力。篩選到的突變株Ge-27最高產(chǎn)量達到79.44mg/L,比原始菌株提高了42.2%,與原始菌株相比,Ge-27發(fā)酵單位有明顯提高。說明采用紫外誘變結(jié)合抗生素抗性篩選可以高效提升達托霉素生產(chǎn)水平;
通過對達托霉素部分ORFs進行實時定量PCR
8、分析后,初步篩選到ORF-12、ORF-53、ORF-21、ORF-31和ORF-22這五個ORF在其生物合成過程中發(fā)揮調(diào)控作用,其中ORF-12、ORF-21和ORF-53這三個ORFs在達托霉素合成過程中的初始階段有可能起到限速作用;ORF-31能在達托霉素后期合成過程中起到正調(diào)控作用;ORF-22在達托霉素生物合成過程中可能起到負調(diào)控的作用,為下一步對單個ORF的功能分析,或者對某一ORF進行敲除或者過表達以提高達托霉素生產(chǎn)水平奠
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