核糖體蛋白RplB的乙?;约癕SMEG_4620的酶學(xué)特性研究.pdf_第1頁
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文檔簡介

1、第一部分:核糖體蛋白RplB的乙?;揎椉捌鋵δ艿挠绊?br>  真核生物的乙酰化研究已經(jīng)非常廣泛和深入,而在原核生物中,雖然大量蛋白質(zhì)被報(bào)道有乙?;揎?,它們幾乎參與了生命活動的所有過程,例如能量代謝、RNA轉(zhuǎn)錄、趨化性等,但是乙?;瘜Φ鞍踪|(zhì)功能的影響仍然知之甚少。本部分我們通過對乙?;D(zhuǎn)移酶Pat進(jìn)行兩步梯度純化并結(jié)合乙?;磻?yīng)發(fā)現(xiàn)核糖體蛋白RplB可以被Pat乙?;揎?,RplB蛋白不僅和復(fù)制起始蛋白DnaA、RNA聚合酶相互作

2、用,而且可以和rRNA結(jié)合,是蛋白質(zhì)翻譯中不可或缺的蛋白質(zhì),因此為了進(jìn)一步考察在大腸埃希菌中乙?;瘜颂求w蛋白RplB功能的影響,本部分以E.coli K12菌株BW25113為研究對象,采用分子生物學(xué)、微生物學(xué)以及生物化學(xué)等方法展開了如下幾部分的研究:
  1.我們通過GST-pulldown的方法證明RplB和Pat、CobB存在相互作用,然后通過建立乙?;c去乙酰化反應(yīng)體系,直接證明了RplB能被Pat乙酰化修飾以及被Cob

3、B去乙酰化修飾;由于RplB和rRNA的結(jié)合與蛋白上所帶的正電荷密切相關(guān),而乙酰化修飾則會中和賴氨酸所帶的正電荷,因此為了考察乙?;瘜plB功能的影響,我們體外將乙?;揎椇臀匆阴;揎椀腞plB和rRNA進(jìn)行孵育之后跑瓊脂糖凝膠電泳觀察兩者與rRNA的結(jié)合能力,結(jié)果顯示,RplB被乙酰化修飾之后,與rRNA的結(jié)合能力顯著下降。之后,我們對核糖體與非核糖體蛋白質(zhì)的賴氨酸含量進(jìn)行了分析,發(fā)現(xiàn)前者的含量明顯高于后者,提示了乙?;锌赡苡绊?/p>

4、到核糖體的組裝以及翻譯效率,而cobB敲除株的生長明顯低于野生株也暗示了這一點(diǎn)。
  2.為了在體內(nèi)考察RplB受Pat/CobB乙?;{(diào)控,我們構(gòu)建了pSUMO-rplB質(zhì)粒并分別與pET28a-cobB以及pET28a-pat在BL21中共表達(dá),發(fā)現(xiàn)與cobB共表達(dá)時RplB的乙?;陆担cpat共表達(dá)時發(fā)現(xiàn)其乙?;撸f明了Pat和CobB在體內(nèi)能對RplB進(jìn)行乙?;揎棧坏窃贐W25113與 pat、cobB敲除株中

5、表達(dá)RplB并比較其乙酰化差異時,發(fā)現(xiàn)cobB敲除株中RplB的乙?;黠@高于野生株,而 pat敲除株RplB的乙?;兓幻黠@,說明了還存在其它對RplB進(jìn)行修飾的因子;最近報(bào)道稱AcP能作為乙?;w對蛋白質(zhì)進(jìn)行乙?;揎?,當(dāng)我們用AcP對RplB進(jìn)行處理時,發(fā)現(xiàn)RplB的乙酰化有明顯的升高。
  3.營養(yǎng)饑餓條件下細(xì)菌生長受阻,為了考察在此條件下RplB的乙?;欠駮l(fā)生變化,我們將對數(shù)期的菌轉(zhuǎn)入氮源缺失的PBS+0.5%

6、glucose中進(jìn)行饑餓處理,發(fā)現(xiàn)隨著時間的延長,RplB的乙?;饾u增高。
  綜上所述,核糖體蛋白RplB能被乙酰基轉(zhuǎn)移酶Pat和去乙?;窩obB共同調(diào)控,而且RplB的乙酰化會降低其和rRNA的結(jié)合;另外我們發(fā)現(xiàn)RplB的乙酰化在氮源饑餓條件下會逐漸增強(qiáng),而且核糖體蛋白質(zhì)賴氨酸含量明顯高于非核糖體蛋白質(zhì),這些都暗示了在氮源饑餓條件下,細(xì)菌可能通過調(diào)節(jié)RplB乃至整個核糖體的乙?;瘉碚{(diào)控自身的生長。這些發(fā)現(xiàn)拓展了乙?;绊懙?/p>

7、白質(zhì)功能的研究,并為核糖體的研究開辟了新的天地。
  第二部分:MSMEG_4620的去乙?;妥陨鞟DP-核糖基化修飾的研究
  Sir2家族蛋白作為結(jié)構(gòu)和功能都非常保守的蛋白質(zhì),參與了包括基因沉默、DNA損傷修復(fù)、生長代謝等幾乎所有的生命活動;本部分我們通過NCBI Blast發(fā)現(xiàn)在恥垢分枝桿菌Mycobacterium smegmatis mc2155中除了存在SIRT2同源蛋白MSMEG_5175外,還存在一個 SI

8、RT4同源蛋白MSMEG_4620,我們分析了體內(nèi)寄生和體外生長的分枝桿菌各個菌株中SIRT2和SIRT4同源蛋白的分布情況,發(fā)現(xiàn)前者只含有SIRT2同源蛋白,而后者則含有兩個同源蛋白,暗示SIRT4同源蛋白跟營養(yǎng)以及初級代謝密切相關(guān),因此本課題采用分子生物學(xué)手段并結(jié)合微生物學(xué)以及生物化學(xué)等方法對MSMEG_4620作了進(jìn)一步的研究:
  1.我們通過加長同源臂的方法構(gòu)建了MSMEG_4620敲除株,并比較了其和野生株在營養(yǎng)相對豐

9、富或者貧瘠的培養(yǎng)基中的生長差異,結(jié)果發(fā)現(xiàn),在營養(yǎng)相對豐富的培養(yǎng)基中,兩者的生長沒什么差異,而在貧瘠的培養(yǎng)基中,MSMEG_4620敲除株明顯低于野生株,說明MSMEG_4620在體外生長的菌株mc2155中起著非常重要的作用。
  2.為了考察MSMEG_4620的去乙?;钚裕覀兺ㄟ^以化學(xué)底物測熒光的方法和通過胞質(zhì)蛋白作Western blot檢測等方法發(fā)現(xiàn)MSMEG_4620在體外具有較弱的去乙?;钚?,但MSMEG_462

10、0敲除之后的胞質(zhì)蛋白乙酰化明顯增強(qiáng),暗示了體內(nèi)可能受到某些因子的激活,我們嘗試在體外反應(yīng)體系中加入各種脂肪酸,發(fā)現(xiàn)油酸可以對MSMEG_4620的去乙酰化活性進(jìn)行激活。
  3.為了考察MSMEG_4620的ADP-核糖轉(zhuǎn)移酶活性,我們在反應(yīng)中添加biotin-NAD+,并以avidin-HRP進(jìn)行Western blot考察ADP-核糖轉(zhuǎn)移酶活性;以組蛋白作為底物進(jìn)行反應(yīng)時,我們發(fā)現(xiàn)MSMEG_4620不能對組蛋白卻能對自身進(jìn)行

11、ADP-核糖基化修飾,而且這種修飾不能被ADP-ribose抑制,反應(yīng)體系通過HPLC也檢測不到ADP-ribose的產(chǎn)生。然后,我們對保守的氨基酸進(jìn)行了突變,發(fā)現(xiàn)ADP-核糖轉(zhuǎn)移酶活性顯著下降,說明了這些氨基酸對其活性至關(guān)重要;接著通過化學(xué)處理的方法,發(fā)現(xiàn)NH2OH可以將MSMEG_4620的ADP-核糖修飾基團(tuán)去除,說明了修飾位點(diǎn)位于精氨酸上。另外,依據(jù)相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道,在反應(yīng)體系當(dāng)中添加各種金屬離子,發(fā)現(xiàn)Fe3+可以增強(qiáng)MSMEG_4

12、620的ADP-核糖轉(zhuǎn)移酶活性。
  4.我們比較了ADP-核糖修飾和未修飾的MSMEG_4620的去乙?;钚?,發(fā)現(xiàn)兩者沒有顯著差異,說明了MSMEG_4620的ADP-核糖修飾不影響其去乙酰化活性。但是不管是哪種活性,MSMEG_4620都會消耗NAD+,因此我們比較了MSMEG_4620敲除株和野生株中的NAD+水平,發(fā)現(xiàn)前者總體而言高于后者。
  綜上所述,我們首次發(fā)現(xiàn)MSMEG_4620具有脂肪酸激活的去乙?;钚?/p>

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